(1) 使用前准备：使用前先离心（见上文），使附于管盖或管壁的蛋白沉于管底；
(2) 溶解液① 要求用无菌去离子水溶解的产品，务必不可用盐溶液，避免过高的盐浓度造成蛋白不可逆的析出；不可用PBS或培养液（1640或DMEM等）直接溶解，否则蛋白可能无法完全溶解，从而导致蛋白活性不足或失活；
② 要求用盐溶液溶解的产品，请依照说明书上的浓度，同样也是为了避免过高的盐浓度；
③ 亦可联系我们的技术支持获得关于单独产品的溶解液的选择。
(3) 溶解到指定的浓度：
① 我们建议最佳浓度一般不低于100 μg/mL，如10μg的冻干粉，则加入10 μL-100μL的溶解液；② 高于或低于最佳浓度，细胞因子可能会不稳定，或者聚集（aggregation），导致部分蛋白沉淀，影响其活性。高于这个浓度范围，可能会超过该蛋白的最大溶解浓度，即蛋白无法完全溶解；
③ 用移液枪轻吹混匀，或将管盖盖好后轻柔颠倒数次进行混匀，低速离心数秒；溶解时不可振荡（vortex，即用涡旋仪进行快速振荡），避免因化学键的断裂造成蛋白失活；
④ 将溶解后的蛋白在室温放置数分钟，以保证蛋白能够充分溶解。建议将不易溶解（slow to dissolve）的蛋白用低速摇床促进其溶解。
(4) 溶解后的保存：不建议用推荐的溶解液做进一步稀释。溶液中的蛋白很容易黏附在冻存管壁，且很难与管壁分离。使用含有载体蛋白的溶液（该溶液通常是指pH近中性，有一定缓冲能力的缓冲液，如PBS，培养液等）预先封闭塑料管壁上的蛋白结合位点，使细胞因子或重组蛋白不会黏于管壁，方可更好地保存蛋白溶液；
① 短期保存：在一般情况下，上文中建议的浓度是较高的。我们建议将该溶液用含载体蛋白（如0.1% BSA、10% FBS、5% HSA）的溶液进行稀释，分装存于4℃并于一周内用完，分装体积不要小于20μL。否则稀释后的细胞因子或重组蛋白很容易会粘附在管壁或瓶壁上，使得溶液中的细胞因子或重组蛋白的浓度下降，从而影响其生物活性；
② 长期保存：若配置的溶液无法一次用尽，我们建议用含载体蛋白（如0.1% BSA、10% FBS、5% HSA）的溶液进一步稀释，分装冻存于-20℃至-80℃，分装体积不要小于20μL；
③ 在做无血清培养或动物的体内实验时，细胞因子中不能含有BSA，FBS或HSA等动物或人的成分，我们建议选用小包装，每次使用一支，用后即废弃。或者用含5%海藻糖（Trehalose）的溶液来稀释已溶解的细胞因子或重组蛋白，然后分装冻存，分装体积不要小于20μL。
